CTAB（Cetyltrimethylammonium Bromide，十六烷基三甲基溴化铵）法是植物基因组DNA提取的经典方法之一，该方法特别适用于含大量多糖和多酚的植物组织。CTAB是一种阳离子去污剂，其作用原理基于离子强度的调控：在低离子强度条件下，CTAB可以从溶液中沉淀核酸与酸性多聚糖；而在高离子强度条件下（NaCl浓度大于0.7 M），CTAB与蛋白质和多聚糖形成复合物而不沉淀核酸，从而实现核酸的选择性保留。在核酸分离过程中，通过有机溶剂（氯仿/异戊醇或酚/氯仿）抽提去除蛋白、多糖、酚类等杂质后，加入乙醇或异丙醇沉淀即可使核酸分离出来。

实验步骤如下：首先进行材料研磨，取0.2-0.5克新鲜植物组织于液氮中研磨成粉末，若进行RNA提取需特别注意使用RNase-free条件。接着进行样品裂解，按照每100 mg研磨粉末使用0.5 ml提取缓冲液的比例转入离心管中，立即加入65℃预热的2×CTAB提取缓冲液，65℃水浴30分钟并间歇混匀，部分研究采用60-65℃加热30-60分钟。然后进行有机溶剂抽提，加入等体积氯仿/异戊醇（24:1）颠倒充分混匀几分钟，12,000 rpm离心5分钟，若样品富含多糖多酚可先用酚/氯仿(1:1)抽提。随后进行核酸沉淀，取上层水相加入等体积异丙醇沉淀DNA，高速离心10-15分钟，改进方案显示优化沉淀温度和沉淀时间可提高DNA产量。最后进行洗涤与溶解，用75%乙醇漂洗一次弃上清，微干燥后加入适量TE缓冲液溶解DNA，部分改进方法省略液氮步骤以降低成本和危害性。

在CTAB法的改良方面，多项研究提出了简化版方法。其中免液氮的改进方法是一个重要发展方向，这种方法不仅降低了实验成本和危险性，同时还能保持较好的DNA提取效果，为实验室常规操作提供了更便捷的方案。

针对不同类型样本，CTAB法也进行了针对性优化。对于水生植物，采用高浓度CTAB和高摩尔盐去除多糖是常见策略；对于多年生植物，则需要增加β-巯基乙醇用量、简化抽提步骤，并使用预冷异丙醇沉淀以提高效果；而对于中药材花瓣等特殊组织，则需添加PVP（聚乙烯吡咯烷酮）并增加抽提次数以有效去除多酚类杂质。

在高通量与自动化方向上，近年来的研究尝试将CTAB法与商业试剂盒相结合，旨在提高效率并减少操作时间。这种结合方法既保留了CTAB法对复杂植物组织的良好提取能力，又吸收了商业试剂盒的操作便利性，为大规模样本分析提供了可能。

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